基因組DNA提取試劑盒簡介：

DNA是遺傳信息的載體，是重要的生物信息分子，是分子生物學研究的主要對象，為了進行測序、雜交、基因表達、文庫構建等試驗，獲得高分子量和高純度的基因組DNA是非常重要的前提，因此基因組DNA的提取也是分子生物學試驗技術中提取試劑盒，如植物、動物、細菌、細胞、血液、酵母等基因組DNA提取試劑盒。所提取的基因組純度高，片段大小在50kb左右。用戶可根據需要選用不同的試劑盒來進行不同樣品的抽提。
基因組DNA提取的原則：
1、保證核酸一級結構的完整性(因為遺傳信息全部儲存在核酸一級結構中，故完整的一級結構是保證核酸結構與功能研究的基礎)。
2、排除其它分子(如蛋白質、多糖、脂類、有機溶劑等)的污染，使下游試驗順利進行。基因組DNA提取的原理和方法：DNA與組蛋白構成核小體，核小體纏繞成中空的螺旋管狀結構，即染色絲，染色絲再與許多非組蛋白形成染色體。染色體存在于細胞核中，外有核膜及胞膜。從組織中提取DNA必須先將組織分散成單個細胞，然后破碎胞膜及核膜，使染色體釋放出來，同時去除與DNA結合的組蛋白及非組蛋白。
1、樣品預處理
從各種不同來源的樣品(如細菌、酵母、血液、動植物組織細胞等)中提取高純度的基因組DNA，因細胞結構及其成分不同，樣品預處理方式也不同，以下簡單介紹常用提取材料的預處理方式，若需詳細了解，請參考本公司各試劑盒說明書。
部分樣品預處理方式:
植物材料  液氮研磨

動物材料   勻漿、液氮研磨

培養細胞   蛋白酶K處理
細菌      溶菌酶破壁
酵母      破壁酶破壁、玻璃珠研磨
血液      紅細胞裂解液去紅

2、細胞裂解
CTAB法：適用于植物組織、真菌等。
CTAB是一種陽離子去污劑，可溶解細胞膜，并與核酸形成復合物。該復合物在高鹽溶液中(>0.7M NaCl)是可溶的，通過有機溶劑抽提，去除蛋白、多糖、多酚等雜質后加入乙醇沉淀即可使核
酸分離出來。
SDS法：適用于細菌、血液、酵母、動物組織、細胞等。SDS是一種陰離子去污劑，可溶解細胞膜，裂解細胞，使蛋白質變性、染色體解體。

其它裂解方法：
物理方式：機械剪切、超聲波破碎、研磨勻漿等
化學方式：異硫氰酸胍、堿裂解等
酶法：蛋白酶K

3、DNA分離純化
純化要求：核酸樣品中不應存在對酶(如核酸內切酶、DNA聚合酶等)有抑制作用的成分。其它生物大分子如蛋白質、多糖、多酚和脂類分子等污染應降低到低程度。排除其它核酸分子的污染，
如提DNA時應去除RNA，反之亦然。
純化方法：細胞破碎后，常使用吸附材料結合方法去除雜質和純化DNA，主要有硅基質材料、陰離子交換樹脂和磁珠等。因硅基質材料可特異吸附核酸DNA，使用方便、快捷，不需要使用有毒溶劑如酚、氯仿等，使得提取基因組像過濾一樣簡單，因此硅基質材料成為大規模分離純化DNA的通用方法。硅基質材料吸附核酸的原理：主要利用DNA在高鹽低pH值環境下與硅基質材料相結合，在低鹽高pH值環境下與硅基質材料脫離的特征。其機理可能是高濃度鹽離子破壞了硅基質水分子結構，形成陽離子橋，當鹽被清除后，再水化的硅石破壞了基質和DNA之間的吸引力，因而DNA從硅基質上被洗脫下來。
注意事項：盡量簡化操作步驟，縮短提取過程，以減少各種有害因素對核酸的破壞。

減少化學物質對DNA的降解，為避免過酸、過堿對DNA雙鏈中磷酸二酯鍵的破壞，操作多在pH值4.0-10.0的條件下進行。防止基因組DNA的生物降解，主要是DNase降解基因組DNA，DNase需二價金屬陽離子如Mg2+等的激活，可用EDTA等金屬離子螯和劑螯和Mg2+以抑制DNase的活性。減少物理因素對DNA的降解，物理降解因素主要包括機械剪切力(如劇烈振蕩、攪拌等)，細胞突然置于低滲液中導致的細胞爆炸式破裂，DNase大量釋放，樣品反復凍融和高溫等。

4、DNA洗脫收集
DNA的洗脫效率取決于以下重要因素：
洗脫液成分：采用硅基質膜吸附的DNA，可將DNA在低鹽高pH值條件下洗脫下來。pH值在7.0-8.5之間洗脫效率較高，pH值低于7.0則洗脫效率很低。一般基因組提取試劑盒中的洗脫緩沖液就TE(pH8.0)，既為DNA從硅基質膜上洗脫下來提供良好的pH環境，其中的EDTA又能保證DNA不被DNase降解，同時由于EDTA濃度非常低，對核酸內切酶、DNA聚合酶的影響非常微弱，不影響后續實驗，可放心使用。
洗脫液體積：當洗脫液體積小于30ul時，洗脫效率很低且不穩定；當洗脫液體積在50-200ul時，洗脫效率穩定在80-90﹪，并可保證得到大產量，因此洗脫液體積不能小于30ul。