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熒光定量 PCR 方法:探針法 VS 染料法?

更新時間:2025-10-22點擊次數:50

熒光定量 PCR 又稱 qPCR,是一項非常常見的分子生物學實驗技術。熒光定量 PCR 熒光為基礎對核酸進行定量分析,其應用非常廣泛,可以用于檢測基因的表達量(RNA 的豐度),驗證表達譜芯片或轉錄組測序的數據,確定病原體的載量,對片段的拷貝數(CNV)進行分析,對基因進行分型等等。

大部分研究者主要的應用是對基因的表達量進行測定,其原理為通過監控反應體系中熒光強度的變化,記錄檢測熒光達到閾值時的循環數(Ct 值)。從理論上說,起始模板量和 Ct 值密切相關,因此我們通過判讀 Ct 值從而對樣本進行定量。

在進行熒光定量 PCR 時,從技術和產品來說,我們往往會有許多選擇,尤其是方法的選擇,對最終結果的準確性至關重要。熒光定量 PCR 從方法上來說可以分為染料法和探針法兩種。

熒光定量 PCR 方法

一、染料法

在國內,染料法一般采用 DNA 染料 SYBRGreenⅠ,染料法使用簡單,成本也相對較低,因此會有很多國內研究者會選擇使用染料法進行后續實驗。在染料法熒光定量 PCR 實驗中,染料能夠與雙鏈結合,從而發光,而在游離狀態下,SYBR Green I 發出微弱的熒光。所以,一個反應發出的全部熒光信號與出線的雙鏈 DNA 量呈比列,且會隨擴增產物的增加而增加。但是染料法檢測的是體系中的所有雙鏈 DNA,因此一些非特異性擴增或者引物二聚體的出現,會極大的影響真實結果的準確性。為此,一些廠商提供 ROX 作為內部熒光參考標準,用來校正背景,但是即便如此,染料法特異性的問題依舊無法與探針法相比。另外染料法無法在同一個反應中檢測多個目的片段,對于復雜序列,如果難以擴增的話,也會受到脫靶效應(如引物二聚體)的影響。在這種情況下,就需要在實驗前期進行熔解曲線分析,判斷擴增所得產物是否只有一種。

二、TaqMan 探針法

TaqMan 探針法 PCR 擴增時,在加入一對擴增引物的同時再加入一個特異性的熒光探針。Taqman 探針為一段線性的寡核苷酸,兩端分別標記一個熒光報告基團(FAM 或 Hex 等)和一個熒光淬滅基團,當探針完整時,報告基團發射的熒光信號被淬滅基團吸收,PCR 儀檢測不到熒光信號;當 PCR 擴增時(在延伸階段),Taq 酶的 5' -3' 外切酶活性將探針酶切降解,使報告熒光基團和淬滅熒光基團分離,從而熒光監測系統可接收到熒光信號,即每擴增一條 DNA 鏈,就有一個熒光分子形成,實現了熒光信號的累積與 PCR 產物形成同步,這也就是探針法定量的原理。

探針法與染料法的最大區別在于,理論上探針法中的熒光信號只來源于目標序列,也就是不受非特異性擴增及引物二聚體的影響。除此之外,人們還可以利用不同探針,在一個體系中使用不同的熒光標記同時檢測多種指標,達到節省實驗成本的目的。在樣本量比較大的情況下,成本甚至可以低于染料法。

因此我們可以看到,在選擇熒光定量實驗時,探針法在特異性和準確性方面遠遠優于廉價的染料法,但在實際使用時,TaqMan 探針高昂的價格常常讓人望而卻步。目前,上海捷瑞生物工程有限公司在強大的探針合成能力的前提下,推出了探針法熒光定量 PCR 服務,以染料法的價格,享受探針法的服務,在相同的經費情況下,提高實驗的準確性和特異性。

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